¡Esta es una revisión vieja del documento!

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||||||||||||||||||| exp03 |||||||||||||||||||||

fecha= 22/05/2020 - 25/05/2020

inoculación granos (grain spawn) desde vial de esporas (pftek)

esporas= psilocibe cubensis b+ vial de esporas, temperatura deseada de almacenamiento 2-8 grados

receta substrato (grain spawn)

* vermiculita * harina de arroz integral (hecha moliendo granos de arroz integral) * yeso (gypsum)

dimensiones del proyecto para monotub granos y fibra de coco (cálculos iniciales)

*caja de fructificación = 35,5 x 23,5 x 18 cm = 9 lt

contenido= 35,5 x 23,5 x 7,5 = 6256,88 cc = 25 tarros de 250 cc

proporción= 1:1
* 1/2 fibra de coco = 13 tarros
* 1/2 inoculum Vr/BRF/Gy miceliado por B+ = 12 tarros

tarros reales usados para la inoculación

*6 x 250 cc *4 x 236,59 cc *4 x 118,29 cc

*total inoculum —> 2919,16 cc *total coco —> 3250 cc *total mezcla —> 6169,16 cc

Itálicasi al momento de la mezcla no hay suficiente inoculum disponible, la ratio puede ser 2:1 (FC/IN) *+ yeso/Gy 2tsp (teaspoon) 10 ml
*cada 20gr de coco seco = 1 tarro de coco hidratado procedimiento
*preparación tarros: coger unos tarros (mejor una medida pequeña, con boca ancha y no alargados para que la aguja pueda llegar al medio del substrato) y hacerles cuatro agujeros en la tapa; se puede usar un clavo y un martillo (fotos).
preparación INOCULUM:
ratio 2 (Vr) : 1 (BRF) : 1 (H2O) + 2tsp de yeso
esto sería 1500 cc : 750 cc : 750 ml
en tarros 6T : 3T : 3T
*notas: - La primera mezcla ha salido demasiado húmeda, al ponerla en los tarros se producían wet spots. Para mejorar la mezcla, he agregado 2 tarros más de vermiculita, 1,5 de BRF y 1/2 tsp de yeso.
- Han salido 2 tarros más de sustrato de 500 y 400 cc respectivamente.
esterilización del substrato
*método de esterilización= esterilización fraccional o tyndallización
*hervir los tarros en una holla con 5/7 cm de agua, poner en el fondo un trapo para que no se quemen. todo esto por 30 min por 3 días consecutivos. durante el día, dejar cubierto con tapa a temperatura ambiente.
*nota= este método asegura la esporulación de posibles bacterias resistentes al calor, las que una vez esporuladas, vienen eliminadas en las esterilizaciones sucesivas.
- 1a esterilización 22/05/2020 22h (aprox), repetido cada 24h por 3 días
- última esterilización 24/05/2020 22h
inoculación desde vial de esporas b+ (LC) de 10ml
*inyectar 1/4 de cc por cada agujero de las tapas de los tarros = 1ml x tarro
*se han noculado: 10 tarros:
*4 de 198,29cc *4 de 236,59cc *2 de 250 cc
Observaciones sobre la técnica:
*antes de empezar aprender como usar bien jeringa y vial (presión, llenado, etc.)
*esterilización herramientas entre tarros, ojo a esterilizar bien, pero sin perder material
*la glove box que hemos construido no es lo más cómodo, posición de los brazos y guantes muy apretados a la hora de trabajar, no da mucho margen de movimiento
*revisar mejor la esterilización del espacio, mesa, etc. para no tener sustos!
*movimientos, cada cosa en su lugar, separar los tarros, las herramientas, el vial. proceder con orden y manteniendo el protocolo de limpieza. cuidado a donde se apoyan las herramientas para evitar esterilizaciones (alcohol y llama) innecesarias
*el tamaño de la aguja que venía con el vial, no llegaba al fondo de los tarros más alargados. en este sentido, mejor usar tarros más pequeños (198,29cc) o conseguir una aguja más larga
*ojo con las condiciones de miceliación: lab, temperatura etc…. resultado = parcialmente conseguido
*estado de los micelios a día 12/09/2020 de los tarros inoculados:
- los de 198,29cc están completamente miceliados
- los de 236,59cc el micelio había empezado a crecer pero se ha estancado (*posibilidad de que esté contaminado por dentro?)
- los de 250cc hay una presencia de micelio que pero no ha crecido en manera considerable. el sustrato se nota particularmente seco
los tarros no inoculados se han contaminados todos