**||||||||||||||||||| exp03 |||||||||||||||||||||**\\ **fecha=** 22/05/2020 - 25/05/2020\\ **inoculación granos (grain spawn) desde vial de esporas (pftek)**\\ **esporas=** psilocibe cubensis b+ vial de esporas, temperatura deseada de almacenamiento 2-8 grados \\ **receta substrato (grain spawn)**\\ * vermiculita * harina de arroz integral (hecha moliendo granos de arroz integral) * yeso (gypsum)\\ **dimensiones del proyecto para monotub granos y fibra de coco (cálculos iniciales)**\\ * caja de fructificación = 35,5 x 23,5 x 18 cm = 9 lt\\ contenido= 35,5 x 23,5 x 7,5 = 6256,88 cc = 25 tarros de 250 cc\\ proporción= 1:1\\ * 1/2 fibra de coco = 13 tarros\\ * 1/2 inoculum Vr/BRF/Gy miceliado por B+ = 12 tarros\\ **tarros reales usados para la inoculación**\\ * 6 x 250 cc * 4 x 236,59 cc * 4 x 118,29 cc\\ * total inoculum —> 2919,16 cc * total coco —> 3250 cc * total mezcla —> 6169,16 cc \\ * nota: si al momento de la mezcla no hay suficiente inoculum disponible, la ratio puede ser 2:1 (FC/IN)\\ + yeso/Gy 2tsp (teaspoon) 10 ml\\ cada 20gr de coco seco = 1 tarro de coco hidratado **procedimiento**\\ * preparación tarros: coger unos tarros (mejor una medida pequeña, con boca ancha y no alargados para que la aguja pueda llegar al medio del substrato) y hacerles cuatro agujeros en la tapa; se puede usar un clavo y un martillo (//fotos//).\\ **preparación INOCULUM:**\\ ratio 2 (Vr) : 1 (BRF) : 1 (H2O) + 2tsp de yeso\\ esto sería 1500 cc : 750 cc : 750 ml\\ en tarros 6T : 3T : 3T\\ * notas: - La primera mezcla ha salido demasiado húmeda, al ponerla en los tarros se producían wet spots. Para mejorar la mezcla, he agregado 2 tarros más de vermiculita, 1,5 de BRF y 1/2 tsp de yeso.\\ - Han salido 2 tarros más de sustrato de 500 y 400 cc respectivamente.\\ **esterilización del substrato**\\ * método de esterilización= **esterilización fraccional o tyndallización**\\ * hervir los tarros en una olla con 5/7 cm de agua, poner en el fondo un trapo para que no se quemen. todo esto por 30 min y por 3 días consecutivos. durante el día, dejar cubierto con tapa a temperatura ambiente.\\ * nota= este método asegura la esporulación de posibles bacterias resistentes al calor, las que una vez esporuladas, vienen eliminadas en las esterilizaciones sucesivas.\\ - 1a esterilización 22/05/2020 22h (aprox), repetido cada 24h por 3 días\\ - última esterilización 24/05/2020 22h\\ **inoculación desde vial de esporas b+ (LC) de 10ml**\\ * inyectar 1/4 de cc por cada agujero de las tapas de los tarros = 1ml x tarro\\ se han noculado: 10 tarros:\\ * 4 de 198,29cc * 4 de 236,59cc * 2 de 250 cc\\ **Observaciones sobre la técnica:**\\ * antes de empezar aprender como usar bien jeringa y vial (presión, llenado, etc.)\\ * esterilización herramientas entre tarros, ojo a esterilizar bien, pero sin perder material\\ * la glove box que hemos construido no es lo más cómodo, posición de los brazos y guantes muy apretados a la hora de trabajar, no da mucho márgen de movimiento\\ * revisar mejor la esterilización del espacio, mesa, etc. (para no tener sustos!)\\ * movimientos, cada cosa en su lugar, separar los tarros, las herramientas, el vial. proceder con orden y manteniendo el protocolo de limpieza. cuidado a donde se apoyan las herramientas para evitar esterilizaciones (alcohol y llama) innecesarias\\ * el tamaño de la aguja que venía con el vial, no llegaba al fondo de los tarros más alargados. en este sentido, mejor usar tarros más pequeños (198,29cc) o conseguir una aguja más larga\\ * ojo con las condiciones de miceliación: lab, temperatura etc…. **resultado =** parcialmente conseguido\\ *estado de los micelios a día 12/09/2020\\ de los tarros inoculados:\\ - los de 198,29cc están completamente miceliados\\ - los de 236,59cc el micelio había empezado a crecer pero se ha estancado (*posibilidad de que esté contaminado por dentro?)\\ - los de 250cc hay una presencia de micelio que pero no ha crecido en manera considerable. el sustrato se nota particularmente seco\\ los tarros no inoculados se han contaminados todos\\ *Update tarros 01/11/20\\ - los de 236,59cc, tres contaminados. uno se ha colonizado de blanco pero no estoy segura si es micelio de b+ o algún otro competidor (cobweb? o algún moho blanco?)\\ - los de 250cc, todos contaminados (mohos o bacterias, wetdrops y olor ácido).